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多重?zé)晒饷庖呓M化染色試劑盒(組合系列)

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 組織微環(huán)境中有復(fù)雜的細(xì)胞組成,這些細(xì)胞的表型、狀態(tài)、豐度、分布都有著重要的生物學(xué)意義和臨床價(jià)值。借助抗體染色可以將其在組織原位上呈現(xiàn)出來。免疫組化染色是一種研究組織形態(tài)和原位蛋白表達(dá)的常見技術(shù),常規(guī)IHC檢測(cè)只能展示單一指標(biāo),難以呈現(xiàn)復(fù)雜的組織微環(huán)境中的細(xì)胞組成、狀態(tài)和關(guān)系,而這些信息對(duì)疾病的診斷和治療至關(guān)重要!

酪氨信號(hào)放大技術(shù)原理:類似常規(guī)免疫組化的DAB顯色方法,TSA技術(shù)同樣采用HRP標(biāo)記的二抗,HRP催化加入體系的熒光素底物,生產(chǎn)活化熒光底物,活化底物可與抗原上的酪氨酸共價(jià)結(jié)合,使樣品上穩(wěn)定的共價(jià)結(jié)合熒光素。之后用熱修復(fù)法洗去非共價(jià)結(jié)合的抗體,在換下一種一抗來第二輪孵育,換另一種熒光素底物,如此往復(fù)就可實(shí)現(xiàn)多重標(biāo)記。
產(chǎn)品組分:*表示可選組分,下單前需要確認(rèn)備注到訂單
名  稱 規(guī)格(100T) 保存溫度 激發(fā)波長(zhǎng)(nm) 發(fā)射波長(zhǎng)(nm)
SuperNova488(200x)*A 50ul -20℃ 490 515
SuperNova532(200x)*B 50ul 527 558
SuperNova555(200x)*C 50ul 555 565
SuperNova594(200x)*D 50ul 593 614
SuperNova620(200x)*E 50ul 617 639
SuperNova640(200x)*F 50ul 642 662
SuperNova680(200x)*G 50ul 681 698
DAPI(100*母液) 100ul 2-8℃ 360 461
信號(hào)放大液 NA    
羊抗小鼠二抗(三選一) *H NA    
羊抗兔二抗(三選一) *I NA    
鼠兔通用二抗(三選一)*J NA    
抗熒光淬滅封片劑 5mlx2      
應(yīng)用
主要用于人源或小鼠組織、石蠟切片、TMA芯片的免疫組化染色。
使用方法
樣本要求:
1. 福爾馬林固定的蠟塊或玻片,大塊組織或TMA,封蠟不能有明顯的破損。
2. 玻片樣本,組織需要緊貼玻片,避免褶皺,玻片不能有破損、劃傷或污漬。
3. 組織最小應(yīng)包含大于1000 個(gè)細(xì)胞。
4. 蠟塊需包埋實(shí)體瘤組織,壞死瘤組織、細(xì)針穿刺物、細(xì)胞甩片樣品會(huì)影響染色效果。
5. 組織應(yīng)當(dāng)用10%中性福爾馬林固定,正常固定時(shí)間為18~24 小時(shí)。
6. 切片厚度為4um 左右,使用防脫玻片。建議玻片在固定后一周內(nèi)制備為佳。
7. 不要在水浴撈片環(huán)節(jié)添加任何粘合劑,樣本應(yīng)置于玻片正面、中央。將撈片豎直置于吸水紙上去除水分,輕敲去除水滴。
8. 切片后玻片置于40℃干燥箱上放置30min,確保水分去除、貼片牢固。

試劑準(zhǔn)備:
1) TBST 洗液:25 mM TRIS-HCl (pH 7.5),150 mM NaCl,0.05% Tween®20 (v/v)
2) 抗原修復(fù)液:根據(jù)一抗選擇檸檬酸鈉或者EDTA修復(fù)液
3) 抗體稀釋液:可做抗體稀釋和封閉使用,即用型
4) 一抗工作液:現(xiàn)用現(xiàn)配,根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)條件優(yōu)化濃度
5) 二抗工作液:二抗工作液為HRP-羊抗鼠兔或兔雙抗
6) 熒光染料染色工作液:系列單色熒光染料為200X 母液,使用前用TSA 信號(hào)放大反應(yīng)液1:
200 稀釋用配好的工作液4℃保存,僅限當(dāng)天使用。
7) DAPI 工作液:DAPI 使用無菌水按1:100稀釋制備工作液

操作步驟:建議采用實(shí)驗(yàn)操作表格進(jìn)行記錄
1. 樣品脫蠟準(zhǔn)備:
a) 溫箱設(shè)置到55℃-60℃,烤片1h 以上。
b) 新鮮二甲苯浸片10min,重復(fù)3 次。
c) 梯度乙醇浸片:100% 3min;95% 3min;70% 3min。
d) 滅菌水洗片1min,重復(fù)3 次。
2. 多重?zé)晒饷庖呓M化染色步驟(A、B、C 三種抗體為例) :
A 抗體
A.1 抗原修復(fù):把1X 抗原修復(fù)液倒入修復(fù)杯中微波爐高火加熱3min 煮沸,立刻放入切片,低火(約20%功率) 繼續(xù)加熱15min 后冷卻至室溫。進(jìn)行該步驟之前建議不放樣品進(jìn)行一次預(yù)實(shí)驗(yàn),檢測(cè)15min 后液面是否高于樣品,避免干片,抗原修復(fù)液不能2 次使用。
A.2 封閉:去除玻片上殘存洗液,用組化筆圈出玻片上的樣本區(qū)域,滴加抗體稀釋液/封閉液,覆蓋樣本區(qū)域, 室溫孵育10min。
A.3 一抗孵育:用抗體稀釋液按照推薦比例稀釋A 抗體,去除玻片上的封閉液,加一抗至完全覆蓋樣本,室溫孵育30min,用1X TBST 浸洗玻片3 次,每次2 分鐘。
A.4 二抗孵育:去除玻片上殘存的洗液,滴加羊抗鼠兔HRP 標(biāo)記二抗抗體,浸沒樣本區(qū)域,室溫孵育10min,用1X TBST 浸洗玻片3 次,每次2 分鐘。
A.5 熒光染色放大信號(hào):去除玻片上殘存的洗液,滴加熒光染料染色工作液,室溫孵育10min,用1X TBST 浸洗玻片3 次,每次2 分鐘。
A.6 微波修復(fù):把1X 抗原修復(fù)液倒入修復(fù)杯中微波爐高火加熱3min,立刻放入切片,低火(約20%功率)繼續(xù)加熱10min 后冷卻至室溫。
B 抗體
B.1 封閉:去除玻片上殘存洗液,用組化筆圈出玻片上的樣本區(qū)域,滴加抗體稀釋液/封閉液,覆蓋樣本區(qū)域, 室溫孵育10min。
B.2 一抗孵育:用抗體稀釋液按照推薦比例稀釋B 抗體,去除玻片上的封閉液,加一抗至完全覆蓋樣本,室溫孵育30min,用1X TBST 浸洗玻片3 次,每次2 分鐘。
B.3 二抗孵育:去除玻片上殘存的洗液,滴加羊抗鼠兔HRP 標(biāo)記二抗抗體,浸沒樣本區(qū)域,室溫孵育10min,用1X TBST 浸洗玻片3 次,每次2 分鐘。
B.4 熒光染色放大信號(hào):去除玻片上殘存的洗液,滴加熒光染料染色工作液,室溫孵育10min,用1X TBST 浸洗玻片3 次,每次2 分鐘。
B.5 微波修復(fù):把1X 抗原修復(fù)液倒入修復(fù)杯中微波爐高火加熱3min,立刻放入切片,低火(約20%功率) 繼續(xù)加熱10min 后冷卻至室溫。
C 抗體
C.1 封閉:去除玻片上殘存洗液,用組化筆圈出玻片上的樣本區(qū)域,滴加抗體稀釋液/封閉液,覆蓋樣本區(qū)域, 室溫孵育10min。
C.2 一抗孵育:用抗體稀釋液按照推薦比例稀釋C 抗體,去除玻片上的封閉液,加一抗至完全覆蓋樣本,室溫孵育30min,用1X TBST 浸洗玻片3 次,每次2 分鐘。
C.3 二抗孵育:去除玻片上殘存的洗液,滴加羊抗鼠兔HRP 標(biāo)記二抗抗體,浸沒樣本區(qū)域,室溫孵育10min,用1X TBST 浸洗玻片3 次,每次2 分鐘。
C.4 熒光染色放大信號(hào):去除玻片上殘存的洗液,滴加熒光染料染色工作液,室溫孵育10min,用1X TBST 浸洗玻片3 次,每次2 分鐘。
C.5 微波修復(fù):把1X 堿性抗原修復(fù)液倒入修復(fù)杯中微波爐高火加熱3min,立刻放入切片,低火(約20%功率) 繼續(xù)加熱10min 后冷卻至室溫。
每輪染色結(jié)束后可用熒光顯微鏡確認(rèn)染色情況,注意用TBST 覆蓋樣品,防止干片。
3. DAPI 復(fù)染及封片:
去除玻片上殘存洗液,滴加DAPI 工作液,室溫孵育5min,用1X TBST 浸洗玻片2 分鐘,用滅菌水洗片2 分鐘, 在樣品上滴加適量抗淬滅封片劑,加蓋玻片,小心排除氣泡,用透明指甲油封住蓋玻片四周,室溫晾干,4℃ 避光保存。
4. 成像:
選用成像設(shè)備按照染料光譜條件設(shè)置拍攝條件,對(duì)染色后的組織片在熒光顯微鏡下數(shù)據(jù)并進(jìn)行
判讀分析。
 
是否允許進(jìn)口
允許
是否危險(xiǎn)品
非危險(xiǎn)品
性能
供應(yīng)商
Absin
存放說明
熒光染料需避光保存,按說明書要求,收到貨起有效期為12個(gè)月。
參考文獻(xiàn)
1.Dabbs David J. 診斷免疫組織化學(xué)(M). 北京:北京大學(xué)醫(yī)學(xué)出版社,2008.9. 2.【美】Ed Harlow, David Lane. 抗體技術(shù)指南(M). 北京:科學(xué)出版社,2002:79-80,105. 3.Stack, E. C., et al., Multiplexed immunohistochemistry, imaging, and quantitation: a review, with an assessment of Tyramide signal amplification, multispectral imaging and multiplex analysis. Methods, 2014 70 (1): 46-58. 4.錢幫國(guó). 焦磊. 多標(biāo)記免疫熒光染色及多普成像技術(shù)在組織學(xué)研究中的應(yīng)用. 中國(guó)組織化學(xué)與細(xì)胞化學(xué)雜志, 2017 (4): 373-382.
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