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細胞耗氧率檢測試劑盒(R01熒光探針法)

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 保存溫度

2-8℃ 避光
注意事項
1.探針-20℃密封避光保存;
2.避免反復凍融。
3.注意防止氧化;
4.試劑拆封后請盡快使用完!
 
有效期
6個月
檢測方法
熒光酶標儀
適用樣本
細胞,分離的線粒體等
產(chǎn)品特點
1.廣泛適用于各種體外模型;不再局限于單層細胞,還能測定懸浮細胞、微生物和特定的 3D 培養(yǎng)物;
2.簡單的“混合-檢測”方案允許使用多種其他分析試劑盒進行多參數(shù)分析;
3.可逆轉(zhuǎn),能夠觀察耗氧量的瞬態(tài)和長時間變化;
4.可適配多數(shù)熒光酶標儀以及標準 96 孔和 384 孔;
5.以高通量的形式方便地測量;
6.無需等待專用設(shè)備空閑所需的實驗室時間,也無需大額資金專用設(shè)備投入。
產(chǎn)品應(yīng)用
線粒體功能和細胞代謝研究
儀器準備
1.熒光酶標儀
須配備相應(yīng)的波長過濾器和溫度控制器。
2.離心機
3.移液器
4.冰箱
5.冰盒
試劑準備
PBS緩沖液或者HBSS
耗材準備
1.黑色透明底熒光專用96孔培養(yǎng)板
2.離心管
3.吸頭
4.一次性手套
使用注意事項
1.螺旋蓋微量試劑管裝的試劑在開蓋前請短暫離心,將蓋內(nèi)壁上的液體收集至管底,避免開蓋時液體灑落。
2.細胞處理需要小心操作,盡量避免人為的損傷細胞。
3.以下操作以96孔細胞培養(yǎng)板為例。其他培養(yǎng)容器或裝置請根據(jù)實際情況調(diào)整試劑用量和檢測方法。各試劑等比例調(diào)整即可。O2熒光探針終濃度25倍稀釋最佳。
4. R01探針的信號變化直接取決于所測量細胞類型的細胞呼吸速率,建議盡可能使用每孔高的細胞密度作為起點,并根據(jù)需要減少細胞數(shù)量。
5.并非所有細胞類型都消耗足夠用于檢測的氧氣。
6.必須使用熒光培養(yǎng)專用的透明底黑色培養(yǎng)板,減少檢測時各孔之間的光互相干擾。
7.用于測定的所有儀器試劑溶液耗材均需37℃預(yù)熱。
8.添加氧氣封閉液時注意避免產(chǎn)生氣泡。
9.盡可能使用多通道移液器添加試劑。
10.如果藥物有紅色熒光(如阿霉素等)需要換液,不含培養(yǎng)基和待測藥物,用HBSS或PBS體系檢測,在無血清無酚紅環(huán)境檢測。
11.建議設(shè)定FCCP處理的陽性對照樣本。
使用方法

關(guān)于儀器設(shè)置:
 溫度對檢測有較大影響。有條件的話,務(wù)必使用配有溫度控制的酶標儀。
 常規(guī)的熒光信號強度測量,使用基于單色儀或基于過濾器的酶標儀,最佳激發(fā)波長使用450-460 nm,發(fā)射波長使用586-600 nm?筛鶕(jù)實際機器和樣本選擇信號最強的波長。
 具有檢測增益參數(shù)(PMT,Parameters)的通常設(shè)置為中或高。
 使用bottom read讀數(shù)和top read讀數(shù)均可,基于不同的細胞模型,建議在預(yù)實驗時兩種讀數(shù)模式均嘗試下,看哪種的趨勢更加明顯。

關(guān)于氧氣封閉液使用:
 氧氣封閉液可以用移液器吸取添加,添加時需要沿著培養(yǎng)板壁慢慢加入,使其順板壁向下流到培養(yǎng)基表面。
 也可以直接用滴瓶滴加,倒轉(zhuǎn)預(yù)熱的滴管瓶并輕輕施加壓力,使封閉液足以充注瓶尖。 每個孔滴兩滴,使每個液滴在孔側(cè)面順應(yīng)向下流到培養(yǎng)基表面。
 使用移液器添加封閉液時,可將黃色吸頭的嘴部用鋒利的刀片或剪刀修剪處理。將豎直吸頭離尖端3-4 mm處45°角修剪處理。
 取下滴管瓶內(nèi)嘴蓋,輕輕吸取預(yù)熱的氧氣封閉液。避免上下吹吸形成氣泡。

關(guān)于細胞培養(yǎng):
 對于貼壁細胞,在200 μL培養(yǎng)基中的96孔板中接種細胞。在37°C的CO2培養(yǎng)箱中孵育過夜。
 對于懸浮細胞,在檢測當天在100 μL培養(yǎng)基中接種。
 注意所需的接種密度取決于細胞類型。 我們推薦進行細胞接種密度預(yù)實驗以確定最佳密度。通常從高細胞密度(通常為60,000)開始,每孔的最佳細胞數(shù)一般為:貼壁細胞每孔80,000個細胞,懸浮細胞每孔5-6 x 105(96孔板)。
 檢測待測樣品都設(shè)置3復孔。
 注意始終在每個96孔板上留出至少6個孔,以免添加細胞作為空白對照和信號控制孔。
1. 準備細胞模型。
2. 培養(yǎng)好的待檢測細胞移除培養(yǎng)基,用PBS洗滌細胞。
3. 加入100 μL新鮮培養(yǎng)基。
4. 加入4 μL R01氧熒光探針,充分混勻。
5. (可選)可以在此處添加待測試化合物(通常為1-10μL)(如果需要的話)。
6. 每孔加入100 μL氧氣封閉液。
7. 然后用該細胞板進行熒光細胞外O2消耗變化情況檢測。
激發(fā)波長455 nm - 468 nm,發(fā)射波長603 nm。測定熒光強度,每2分鐘或3分鐘讀取一次。
8. 繪制耗氧率曲線。
9. 計算每個樣品的斜率值。


 
常見問題分析
1.耗氧率檢測趨勢跟預(yù)期的不一致?
可以從以下方面改善:
檢查細胞接種和移液的一致性。
增加細胞密度。
將測定體積減少到60微升。
在某些較短的檢測時間區(qū)間內(nèi),會出現(xiàn)熒光數(shù)據(jù)的波動情況,出現(xiàn)斜率下降或不變化,需要擴大到更長的時間范圍內(nèi)來分析耗氧率趨勢。一般檢測時間范圍不少于30分鐘。
溫度對檢測有較大影響。有條件的話,務(wù)必使用配有溫度控制的酶標儀,儀器以及所有培養(yǎng)基和儲備溶液均須使用前37℃預(yù)熱。注意某些讀板器的溫度控制不一致,如果存在這種情況,請考慮將測定和平衡溫度降低到30℃,避開外圈。

2.使用的細胞類型靈敏度不夠?
可以考慮以下改善方案:
增加酶標儀的增益(PMT)設(shè)置。
在無酚紅或無血清的情況下測定。
增加 R01氧熒光探針的體積(至10 μL/孔)。
減少 R01氧熒光探針的體積(至2 μL/孔)。
增加細胞密度。
將測定體積減少到60微升。
測量底部讀數(shù)(如果有)。
調(diào)整焦距。
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